大鼠血管內(nèi)皮細胞分離液試劑盒

產(chǎn)品型號： VE2011RAT

所屬分類：分離液試劑盒

產(chǎn)品時間：2025-07-19

簡要描述：本品用于分離大鼠血管內(nèi)皮細胞
Store at: RT° C 試劑盒內(nèi)容
試劑：全血及組織稀釋液 100ml
試劑：細胞洗滌液 100ml
試劑B： 100ml
試劑C： 100ml
試劑D： 100ml
說明書 1份

聯(lián)系我們 在線咨詢

大鼠血管內(nèi)皮細胞分離液試劑盒

Store at：：：RT 試劑盒規(guī)格

試劑盒內(nèi)容：

全血及組織稀釋液 100ml

細胞洗滌液 100ml

試劑 B 100ml

試劑 C 100ml

試劑 D 100ml

說明書 1 份

大鼠血管內(nèi)皮細胞分離液試劑盒

1. 適用于人或各種動物本系列產(chǎn)品檢索

2. 相關(guān)試劑及耗材

3. 注意事項

4. 應用

5. 產(chǎn)品性能指標

6. 貯藏及保存期限

7. 實驗前準備

8. 使用方法說明及圖例

9. HES-TBD550 使用說明

10. 組織單細胞懸液的制備

11. 生產(chǎn)企業(yè)

12. 參考文獻

1. 適用于人或各種動物本系列產(chǎn)品檢索：：：：

B．．．． 耗材

貨號 名稱及規(guī)格 生產(chǎn)廠商 價格

貨號          品牌              產(chǎn)品名稱                            規(guī)格  價格

3516 6 孔細胞培養(yǎng)板 50 塊/箱 Costar 686.00

3513 12 孔細胞培養(yǎng)板 50 塊/箱 Costar 675.00

3524 24 孔細胞培養(yǎng)板 100 塊/箱 Costar 1287.00

3548 48 孔細胞培養(yǎng)板 100 塊/箱 Costar 1542.00

3599 96 孔細胞培養(yǎng)板 100 塊/箱 Costar 1367.00

430168 25CM 細胞培養(yǎng)瓶(密封蓋) 20 個/包 Corning 113.00

430639 25CM 細胞培養(yǎng)瓶(透氣蓋) 20 個/包 Corning 132.00

430720 75CM 細胞培養(yǎng)瓶(密封蓋) 5 個/包 Corning 56.00

430641 75CM 細胞培養(yǎng)瓶(透氣蓋) 5 個/包 Corning 59.00

430823 150CM 細胞培養(yǎng)瓶(密封蓋) 5 個/包 Corning 102.00

430825 150CM 細胞培養(yǎng)瓶(透氣蓋) 5 個/包 Corning 107.00

431079 175CM 細胞培養(yǎng)瓶(密封蓋) 5 個/包 Corning 133.00

431080 175CM 細胞培養(yǎng)瓶(透氣蓋) 5 個/包 Corning 139.00

431081 225CM 細胞培養(yǎng)瓶(密封蓋) 5 個/包 Corning 167.00

431082 225CM 細胞培養(yǎng)瓶(透氣蓋) 5 個/包 Corning 176.00

430790 15ml 離心管（含泡沫架） 50 支/包 Corning 92.00

430828 50ml 離心管（含泡沫架） 25 支/包 Corning 55.00

430776 250ml 離心管 102 支/箱 Corning 1176.00

4485 1ml 移液管 50 支/包 Costar 55.00 www.tbdscience.com

4486 2ml 移液管 50 支/包 Costar 63.00

4487 5ml 移液管 50 支/包 Costar 92.00

430659 2ml 凍存管（可立外旋） 50 支/包 Corning 117.00

430663 5ml 凍存管（可立外旋） 50 支/包 Corning 131.00

GP2012 玻璃吸管 10 支/包 TBD 30.00

GT201210 10ml 玻璃離心管 10 支/包 TBD 90.00

GT201250 50ml 玻璃離心管 5 支/包 TBD 120.00

L147 100/200 目不銹鋼濾網(wǎng) TBD 150.00

3. .. 注意事項

A． 本分離液是敏光型的，在運輸和貯藏過程中應在 18℃-25℃避光保存，啟封后置 4

℃保存避免微生物污染。另外，本品為真空包裝，未啟封前置于 10℃ 以下易出現(xiàn)白色結(jié)晶，

影響分離效果。

B． 待分離的樣品要求新鮮，避免冷凍和冷藏。分離液和所分離樣本一定在 20℃水浴

箱中復溫 20 分鐘保證分離液和所分離樣本溫度在 20℃±2℃時分離效果，且所有操作

過程一定要在無菌條件下進行。

C． 由于各品牌離心機的性能不同，國內(nèi)南北地區(qū)溫度環(huán)境和四季的差異，可能影響

分離效果，用戶可以調(diào)節(jié)離心轉(zhuǎn)數(shù)，調(diào)節(jié)離心的時間，摸索*的分離條件（具體分離條件

各實驗室自定）。

D． 使用無靜電反應的離心管，推薦使用未經(jīng)過堿處理的玻璃離心管。

E． *抗凝劑選擇：EDTA、枸櫞酸、肝素。應注意在血液稀釋過程中應去除抗凝劑

體積。

 F． 分離過程中所用其他試劑如：羥乙一基淀粉 550、全血及組織稀釋液、細胞洗滌液及

紅細胞裂解液等以我公司產(chǎn)品為*選擇，本公司相關(guān)系列產(chǎn)品無菌、無病毒、無支原體、

低內(nèi)毒素水平且無細胞毒性，所獲得的細胞可保持完好的生物活性和完整的細胞形態(tài)。

4. .. 應 用

適用于從人或各種動物血液中分離內(nèi)皮細胞。

5.. . . 產(chǎn)品性能指標

pH 7.0-7.5

滲透壓 280-340mOsmol/kg www.tbdscience.com

內(nèi)毒素 ≤0.5...EU/ml

無菌 直接接種培養(yǎng) 14 天后培養(yǎng)基澄清

澄明度及不溶性顆粒物 每 50ml 溶液中含 10μm 以上的不溶性微粒 以上的不溶性微粒 以上的不溶性微粒 20 粒以下，，，，含 25μm 以上的不溶性微粒 以上的不溶性微粒 以上的不溶性微粒 5 粒以下6.. . . 貯藏及保存期限 貯藏及保存期限18℃-25℃避光保存，有效期兩年。啟封后置 4℃保存，有效期一周。

注：：：：若保證無微生物污染，啟封后可置 4℃長期保存。但應注意保存溫度較低時本分離液易出現(xiàn)白色結(jié)晶，影響分離效果。

7. .. 實驗前準備

A． 試劑

內(nèi)皮細胞分離液試劑盒所含試劑、組織勻漿液、胎牛血清

B． 器材

玻璃離心管、玻璃滴管

水平轉(zhuǎn)子離心機、無菌工作臺

8.. . . 使用方法說明及圖例 使用方法說明及圖例

A. 在 10ml 或 15ml 玻璃離心管中依次小心加入 B、C、D 三種液體各 2ml,制成梯度界面（各液面分層一定要清晰）；

B．取 1ml新鮮抗凝血與全血及組織稀釋液（Cat#：2010C1119）1：1混合并小心加于D液之液面上；或取組織勻漿單細胞懸液（細胞濃度為2×108-1×109個/ml，具體制備方法參照“二、組織單細胞懸液的制備”）小心加于D液之液面上；

C. 以400g（約1500轉(zhuǎn)/分）離心15分鐘(半徑15cm水平轉(zhuǎn)子)； 此時離心管中由上至下細胞分為六層。*層；為血漿層或組織勻漿液層。第二層；；；；為富含內(nèi)皮細胞的 D 液層。。。。第三層；為 C 液層。第四層；為單個核細胞層。第五層；為 B 液層。第六層；為紅細胞層。收集第二層富含內(nèi)皮細胞的 D 液層放入含 4-5ml 細胞洗滌液（Cat#：2010X1118）的試管中，充分混勻后，以 500g（約 1800 轉(zhuǎn)/分）離心 20 分鐘，棄去上清留沉淀細胞重新懸起。重復洗滌 2 次即得所需內(nèi)皮細胞。 沉淀細胞

注：：：：A. 提取率約為 80%。

9. HES. . HES-TBD550 使用說明

HES 是從支鏈淀粉衍生出來的，是富含淀粉的復合物，其生理和化學特性主要由羥乙一基

取代度即取代級、平均分子量決定。大量實驗表明平均分子量越大對紅細胞的凝集作用越強，

有效提高紅細胞的沉降速度，從而使紅細胞與其它細胞分離。故而，使用 HES-TBD550（羥

乙基淀粉 550）沉淀法是一種高效的細胞分離方法。 間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells ,MSCs) 是指一群可向成骨細胞、成脂肪細胞、骨髓基質(zhì)細胞、肝臟細胞、心肌細胞和神經(jīng)細胞等多種細胞分化的多潛能組織干細胞,是在細胞治療、基因治療中有效發(fā)揮作用的理想工程細胞。MSCs 不僅存在于骨髓,也可從臍血、外周血中以及脂肪組織、肌肉、胎兒器官、大腦、牙齒中分離。UCB - MSCs 的分離、篩選、增殖、分化與臍血樣本的選擇、培養(yǎng)基的差異以及分離、擴增分化過程中操作技術(shù)等多種因素有關(guān)。目前用于 UCB - MSCs 分離的方法有:貼壁篩選法、密度梯度離心法、流式細胞儀法和免疫磁珠法。流式細胞儀法對細胞損傷較大，免疫磁珠法價格相對較貴且由于抗原抗體反應也容易改變細胞原有特性，而 HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550）聯(lián)合密度梯度離心法常與貼壁篩選法結(jié)合使用,可提高所得 UCB - MSCs 的純度，目前研究多采用此法。國內(nèi)不少學者采用羥乙一基淀粉沉淀紅細胞，然后再進行離心分離單個核細胞，也取得不錯結(jié)果。實驗證明采用隨機數(shù)字表法，將每份臍血隨機分入兩個不同處理組，從而將臍血樣本的個體差異減小到zui小程度。結(jié)果證實，HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550）聯(lián)合密度梯度離心法獲得的有核細胞數(shù)量明顯多于 FICOLL 密度梯度離心法。本實驗采用的羥乙一基淀粉商品名為 HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550），克分子滲透壓為 308mosm／L，膠體滲透壓為 68／36 mmHg,可影響紅細胞集聚性沉降率。紅細胞集聚是可遞性橋接結(jié)構(gòu)形成的結(jié)果，由大的 HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550）分子處在紅細胞之間聯(lián)接而成。HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550）同時還阻礙白細胞和內(nèi)皮細胞的黏附，并使平均血小板容積呈現(xiàn)微弱地降低，從而有輕度抑制血小板集聚的功能。臍血經(jīng) HES-TBD550（羥乙一基淀粉 550）處理后，可使紅細胞沉積至試管底，對其它主要成分包括干細胞無影響。經(jīng)這樣處理后，實驗時間相對較短（平均為 1.5 h），步驟相對較少，細胞污染幾率小，從而使細胞數(shù)損失減少。結(jié)論證明，與相應的干細胞分離液聯(lián)合分離使用羥乙一基淀粉沉淀法是一種高效的臍血干細胞分離方法。

10.. . . 組織單細胞懸液的制備 組織單細胞懸液的制備

注：：：：A.. .. 本說明只提供機械勻漿制備單細胞懸液的方法 本說明只提供機械勻漿制備單細胞懸液的方法 本說明只提供機械勻漿制備單細胞懸液的方法，，，，酶消化法由于各實驗室選取的消化 酶消化法由于各實驗室選取的消化

酶種類各不相同，，，，請各實驗室自行選擇進行試驗 請各實驗室自行選擇進行試驗 請各實驗室自行選擇進行試驗。。。。

B. .. 全過程及所需試劑要求無菌環(huán)境 B. 全過程及所需試劑要求無菌環(huán)境 全過程及所需試劑要求無菌環(huán)境。。。。

剪碎法：：：：將組織塊放入平皿后，加入少量組織勻漿液及 20%胎牛血清；用眼科剪將組織剪至勻漿狀，加入 5ml 組織勻漿液及 20%胎牛血清；用吸管吸取組織勻漿，用 100 目不銹鋼濾網(wǎng)(另購)過濾到試管內(nèi)；離心沉淀 1500轉(zhuǎn)/分×3 min，再用細胞洗滌液清洗 3次，每次以 500rpm短時低速離心除去細胞碎片，以 200 目不銹鋼濾網(wǎng)（另購）過濾去細胞團塊。作細胞計數(shù)并調(diào)整細胞濃度為（2～5）×107個/ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用 20%胎牛血清或全血及組織稀釋液懸起細胞濃度為 2×108-1×109個/ml 的單細胞懸液備用。 勻漿器法：用眼科剪將組織剪成小塊；放入 70ml 組織研磨器內(nèi)，加入 2ml 組織勻漿液及 20% 勻漿器法胎牛血清；緩慢轉(zhuǎn)動研棒，研磨至勻漿；用 5ml 組織勻漿液及 20%胎牛血清沖洗研器；收集細胞懸液，經(jīng) 200 目不銹鋼濾網(wǎng)（另購）過濾；離心沉淀 800rpm×2min ，再用細胞洗滌液洗 3 次，離心沉淀。作細胞計數(shù)并調(diào)整細胞濃度為（2～5）×107個/ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用 20%胎牛血清或全血及組織稀釋液懸起細胞濃度為 2×108-1×109 個/ml 的單細胞懸液備用。 細胞計數(shù)方法: 細胞計數(shù)法是用來計數(shù)細胞懸液中細胞數(shù)量的一種方法。一般利用計數(shù)板（血球計數(shù)板）進行。既可用于分離（散）細胞培養(yǎng)接種前計數(shù)所制備的細胞懸液中的細胞數(shù)量，也可用于對培養(yǎng)物的細胞數(shù)量進行計數(shù)。不論計數(shù)的對象如何，均須制備分散的細胞懸液。 計數(shù)與計算過程

1）、在細胞計數(shù)板中央放置計數(shù)的蓋玻片。

2）、用玻璃虹吸管吸取細胞，讓虹吸管在蓋玻片上或下側(cè)的計數(shù)板凹蹧處流出懸液，至

蓋玻片被液體充滿為止。

3）、置顯微鏡下計數(shù)四角大方格內(nèi)的細胞總數(shù)。對于壓線的細胞只計數(shù)在上線和左線者，

對于細胞團按單個細胞計數(shù)。

4）、按下式計數(shù)細胞懸液的密度：

細胞密度＝（4 個大格細胞總數(shù)/4）×104個/ml×稀釋倍數(shù)

公式中乘以 104因為計數(shù)板中每一個大格的體積為：

1.0mm（長）×1.0mm（寬）×0.1mm（高）＝0.1mm3而 1ml＝1000mm3

細胞計數(shù)要點： 細胞計數(shù)要點：：：

A． 進行細胞計數(shù)時，要求懸液中細胞數(shù)目不低于 104個/ml，如果細胞數(shù)目很少要進行離

心再懸浮于少量培養(yǎng)液中；顯微鏡下計數(shù)時，遇到 2 個以上細胞組成的細胞團，應按單個細胞計算。如果細胞團>10％，說明細胞分散不充分; 或細胞數(shù)<200 個/10mm2或>500 個/10 mm2 時，說明稀釋不當，需重新制備細胞懸液。

B． 要求細胞懸液中的細胞分散良好，否則影響計數(shù)準確性。

C． 取樣計數(shù)前，應充分混勻細胞懸液，尤其是多次取樣計數(shù)時更要注意每次取樣都要混

勻，以求計數(shù)準確；

D． 數(shù)細胞的原則是只數(shù)完整的細胞，若細胞聚集成團時，只按照一個細胞計算。如果細

胞壓在格線上時，則只計上線，不計下線，只計左線，不計右線。

E． 操作時，注意蓋玻片下不能有氣泡，也不能讓懸液流入旁邊槽中，否則要重新計數(shù)。

初學者易犯的錯誤： 初學者易犯的錯誤：：：

A． 計數(shù)前未將待測懸液吹打均勻。

B． 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現(xiàn)氣泡。

C． 滴入懸液時的量太多，至使細胞懸液流入旁邊的槽中。

11.. . . 生產(chǎn)企業(yè)

12.. . . 參考文獻

［1］ Meier C, Middelanis J, Wasielewski B, et al. Spastic paresis after perinatal

brain damage in rats Is reduced by human cord blood mononuclear cells［J］. Pediatric

Research, 2006,59(2):244-249.

［ 2］ Boyle AJ, Schulman SP, Hare JM , et al. Stem cell therapy for cardiac

repair:ready for the next step［J］. Circulation, 2006, 114(4):339-352.

［3］ 程范軍,鄒 萍,楊漢東,等.人臍血間充質(zhì)干/ 祖細胞誘導為心肌樣細胞的實驗研究［J］.

中華器官移植雜志,2003,24:220-222.

［4］Dennis JE,Charbord P.Origin and differentiation of human and murine stroma

［J］.Stem Cells,2002,20(3):205.

［5］ Yu JC, Daniel TS, Ching PT, et al. Disparate mesenchyme-lineage tendencies

in mesenchymal stem cells from human bone marrow and Umbilical Cord Blood［J］. Stem

Cells, 2006,24(3) : 679-685.

［6］ Compagnoli C, Roberts IAG, Kumar S, et al. Identification of mesenchymal

stem/progenitor cells in human first trimester fetal blood, liver and bone marrow

［J］. Blood, 2001,98:2396-2402.

［7］ Miura M, Gronthos S, Zhao M, et al. SHED: stem cells from human exfoliated

deciduous teeth［J］. Proc Natl Acad Sci USA, 2003,100:5807–5812.

［8］ 遲作華, 張 洹, 何冬梅, 等. 臍血間充質(zhì)干細胞培養(yǎng)條件的優(yōu)化［J］. 中國實用內(nèi)

科雜志,2006, 26(5):372-375.

［9］ 向 靜, 江德鵬, 王昌銘，等. 臍血單個核細胞體外培養(yǎng)和誘導后神經(jīng)干細胞標志物

mRNA 的表達［J］. 重慶醫(yī)科大學學報,2005 ,30 (3):352-355.

［10］ 孫海梅，季鳳清，李榮平，等.不同培養(yǎng)條件下人臍血間充質(zhì)干細胞的差異［J］. ***，

2006, 10( 45 )：51-53.

［11］ 朱美玲，伍新堯，陳汝光，等.不同分離方法分離臍血造血細胞效率的比較［J］. 中

國輸血雜志,2002 , 15 (3):179-780.

［12］ 鄭德先，吳克復，褚建新.現(xiàn)代實驗血液學研究方法與技術(shù).北京醫(yī)科大學中國協(xié)和

醫(yī)科大學聯(lián)合出版社，1999.

［13］ 鄂征.組織培養(yǎng).北京出版社，1995.

［14］ 朱立平，陳學清.免疫學常用實驗方法.人民軍醫(yī)出版社，2000.